New Drug R & D Technology Platform
Target Discovery and Validation
In Vivo Pharmacology
Non-GLP Toxicity
Pathology
- 病理染色
- 单色和多色IHC/IF
- 组织芯片(TMA)
- 临床检验
Clinical Pathology
Tissue Microarray
IHC/IF
Histopathology
CDX转移肿瘤模型
自发转移动物模型
荧光自发性转移肿瘤动物模型主要通过荧光肿瘤的原位器官移植来产生与临床相似的自发性肿瘤转移。该类模型主要通过鼠源同种原位肿瘤动物模型和有高转移特性的人异种原位肿瘤动物模型建立。
特点和用途:
1)荷瘤动物肿瘤转移途径和表现与临床相似。
2)通过荧光影像可实时动态追踪肿瘤的转移。
3)无须病理检查,通过荧光影像可快速分析荷瘤动物出现的肿瘤转移,评价药物对肿瘤转移的作用。
4)可用于同时评价药物对荷瘤动物原发肿瘤和转移的作用。
模型种类:目前可提供下列荧光自发转移动物模型用于体内抗转移研究,我们将不断增加新的肿瘤细胞类型。我们也可采用客户提供的细胞株,经验证后用于实验。
| 肿瘤类型 |
肿瘤细胞系 |
| 乳腺癌 |
4T1-G |
|
|
MMT060502-GR |
| 黑色素癌 |
B16F10-G |
| 肺癌 |
Lewis lung-G |
| 胰腺癌 |
MiaPaca-2-R |
| 前列腺癌 |
PC-3-G |
| 肠癌 |
HCT116-G |
实验设计:
1)动物和分组:实验由阴性对照组、阳性对照组和客户选定的1-3个药物实验组组成。阴性对照组15只动物,阳性对照组和实验组每组15只动物。
2)治疗:治疗开始时间可选择肿瘤接种后3天或当原发肿瘤生长至100mm3时开始给药。给药方式包括皮下、肌肉、尾静脉、腹腔及口服灌胃。可治疗时间取决于所用的肿瘤类型和细胞系,通常为4-8周.
分析指标:
1)荷瘤鼠临床症状观察
2)荧光测量不同时间点肿瘤体积变化
3)荷瘤鼠体重变化
5)血液标本采集
6)实验终点荧光检测肿瘤转移发生率
7)实验终点肿瘤重量
8)原发肿瘤和主要器官标本采集
9)病理学检查
10)肿瘤相关标志物和基因改变
实验转移动物模型
荧光实验转移肿瘤动物模型是通过静脉、脾脏、腹腔和淋巴结等途径将荧光肿瘤细胞注入动物体内,使其产生相应的实验性肿瘤转移。
特点和用途:
1)模型动物肿瘤转移率高、重复性好。
2)通过荧光影像可实时动态追踪肿瘤的转移。
3)无须病理检查,通过荧光影像可快速分析荷瘤动物出现的肿瘤转移,评价药物对肿瘤转移的作用。
4)用于抗肿瘤转移药物评价和抗转移机理研究。
模型种类:目前可提供下列荧光实验转移动物模型用于体内抗转移研究,我们将不断增加新的肿瘤细胞类型。我们也可采用客户提供的细胞株,经验证后用于实验。
| 肿瘤类型 |
肿瘤细胞系 |
肿瘤细胞种植途径 |
转移部位 |
总转移率 |
| 黑色素癌 |
B16F10 |
尾静脉 |
肺、淋巴结 |
|
| 前列腺癌 |
PC-3 |
骨 |
骨 |
|
| 肠癌 |
HCT116 |
脾脏 |
肝 |
|
| 卵巢癌 |
OVCAR-3 |
腹腔 |
腹腔 |
|
实验设计:
1)动物和分组:实验由阴性对照组、阳性对照组和客户选定的1-3个药物实验组组成。阴性对照组10只动物,阳性对照组和实验组每组10只动物。
2)治疗:治疗开始时间可选择肿瘤接种后3天或用荧光影像可见转移肿瘤时开始给药。给药方式包括皮下、肌肉、尾静脉、腹腔及口服灌胃。可治疗时间取决于所用的肿瘤类型和细胞系,通常为4-8周.
分析指标:
1)荷瘤鼠临床症状观察
2)荧光测量不同时间点转移肿瘤大小和发生部位
3)荷瘤鼠体重变化
4)血液标本采集
5) 荷瘤鼠生存时间
6)实验终点荧光检测肿瘤转移发生率
7)转移肿瘤和主要器官标本采集
8)病理学检查
9)肿瘤相关标志物和基因改变
CDX转移肿瘤模型SOC
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转移性病变分析 (纵隔淋巴结/右肺转移/下颌骨转移/远处皮下转移)
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应用足底淋巴结肿瘤转移小鼠模型评价分子药效
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White arrow: primary tumor; Blue arrow: lymph-node metastasis |
足底淋巴结肿瘤转移分析 |




